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磁珠法PCR產(chǎn)物凝膠回收純化試劑盒
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試劑盒簡介：
本試劑盒利用硅羥基磁珠特異吸附核酸原理， 可快速有效的純化產(chǎn)物。廣泛地應(yīng)用于PCR產(chǎn)物純化及凝膠電泳回收。
整個 純化過程可以在1個小時內(nèi)完成， 過程種不需要酚氯仿等有毒試劑，可以直接用于PCR、Southern blotting等下游試驗。
實驗流程圖（資源處可下載）：
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資 源
常見問題
一：(DNA)植物樣本處理量不確定問題的解決方案
對于植物樣本，樣本處理量無法統(tǒng)一確定，對于一般樣本（煙草，擬南芥等），提取量不超過100mg鮮重組織或者20mg干重組織，對于復(fù)雜樣本（水稻，玉米，榆樹等），建議初始樣本量不超過50mg鮮重或者10mg干重組織；如果需要較高的DNA量，可以采取多管濃縮的方法提取DNA;
二：(DNA)如何處理短時間內(nèi)無法低溫處理的DNA樣本？
對于植物樣本，如果短時間不能低溫處理，建議使用硅膠顆粒干燥樣本，防止DNA嚴重降解；研磨處理材料過程中盡量不要過量，否則會導(dǎo)致DNA產(chǎn)量低；材料過量也會使樣本出現(xiàn)團塊無法裂解，導(dǎo)致離心柱堵塞，無法獲得高質(zhì)量DNA;
三：DNA提取中A260/280比值波動是什么原因
對于基因組DNA提取，A260/280值如果低于1.7說明有可能存在蛋白污染，如果值大于1.9，說明可能存在RNA污染；如果洗脫樣本時沒有使用Buffer EB，而使用ddH20，比值或偏低，因為Ph值會影響吸光值，并不表示樣本純度低；
四：(DNA)離心柱漂洗完成后需要注意什么
離心柱漂洗完成后，盡可能烘干柱膜上殘留乙醇，殘留乙醇會影響洗脫效率和下游實驗效果；如果A260/230值過低，說明樣本提取過程中，漂洗不徹底，有鹽離子殘留，建議增加漂洗次數(shù)；
五：(DNA)試劑盒中Buffer EB含微量EDTA怎樣處理
試劑盒中Buffer EB中含有少量EDTA，可能影響下游實驗，使用時適當稀釋，如果用其他洗脫液洗脫，要確保PH>7.5，PH過低影響洗脫效率。
六：(DNA)基因組DNA樣本儲存需要注意什么
待提取樣本盡量避免反復(fù)凍融，否則會導(dǎo)致提取的DNA片段降解或者DNA得率嚴重下降。
七：血液樣本DNA提取注意事項
對于血液樣本，最好使用新鮮血液樣本或者4℃存放少于2天的樣本，否則會嚴重降低DNA產(chǎn)量；盡量避免反復(fù)凍融（不超過3-5次），每一次凍融都會降低DNA得率；
如果樣本中含有血塊，說明樣本收集時未加入血液抗凝劑；建議重新收集樣本并加入EDTA，肝素，檸檬酸等抗凝；在使用紅細胞裂解液處理血液時，確保血液樣本已經(jīng)恢復(fù)到室溫狀態(tài)；處理過程中盡可能混勻樣本，防止紅細胞裂解不完全；
八：植物樣本DNA提取注意事項（一）
對于植物樣本，樣本處理量無法統(tǒng)一確定，對于一般樣本（煙草，擬南芥等），提取量不超過100mg鮮重組織或者20mg干重組織，對于復(fù)雜樣本（水稻，玉米，榆樹等），建議初始樣本量不超過50mg鮮重或者10mg干重組織；如果需要較高的DNA量，可以采取多管濃縮的方法提取DNA;
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